近几年,医院坚持科技兴院、人才强院战略,特别重视青年医生的培养和发展,为医院的发展注入了活力和源泉。按照全面提高和重点培养相结合,培养和适用相结合的办法,每年都有大批青年骨干到华西、省人民医院、成都中医大附属医院和广元三甲医院进修学习,进修回院后院内交流学习成果,科内新业务、新技术陆续开展,团队业务水平得到了明显提高。
杨丽华同志就是我院优秀青年后备人才队伍中的一员,本文是她在华西进修期间的学习心得,已经华西医院教授审核并在华西微网和官网发出,供全院交流学习,这对杨丽华同志是一个极大的肯定和鼓励。
希望中医院广大青年不断创新工作方法,不断攻克工作难题,不断提高自己的专业素养,完善本职工作,以更加饱满的热情投入到工作中,更好地为人民服务。
金黄色葡萄球菌小菌落变异型引起的感染
现病史
患者,男,41岁,因右下肢骨折术后12年,右小腿伤口反复间断肿痛、流脓2年。
既往史
患者于12年前因车祸伤致右下肢开放粉碎骨折合并血管、神经损伤,住我院骨科行右下肢伤口清创、损伤血管吻合、骨折复位钢板内固定术,伤后患者残留右足下垂内翻畸形以及右小腿前内及外侧麻木至今,患者术后3个月扶双拐下地负重行走,于术后7个月完全弃拐行走。
2+年前,患者右小腿上段无明显诱因出现红肿疼痛,不久出现皮肤破溃,有约2cm小伤口,就诊我院骨科门诊,予伤口换药、口服阿莫西林胶囊约20天,伤口红肿消退自行愈合。
之后间隔1年再次出现上部位伤口红肿、疼痛、皮肤未破溃按上处理,半个月再次红肿疼痛消退。
于去年10月份,该部位又出现红肿、疼痛以及破溃流脓,再次我院门诊换药、口服头孢克洛治疗,伤口未见最终愈合,为进一步治疗经门诊检查后,以“右股骨干、右胫腓骨骨折内固定术后(骨性愈合);右小腿感染;右下肢腓总神经损伤;右踝关节僵直”收住。患者右小腿出现红肿、疼痛、破溃流脓期间均无发热,精神、饮食良好,大小便正常。
既往史:无
输血史:有
个人史:无不良嗜好
查体
T:36.3℃,P:85次/分,R:19次/分,BP:117/80mmHg。神志清楚,无病容,皮肤巩膜无黄染,全身浅表淋巴结未见肿大。颈静脉正常。心界正常,心律齐,各瓣膜区未闻及杂音。胸廓未见异常,双肺叩诊呈清音,双肺呼吸音清,未闻及干湿啰音及胸膜摩擦音。腹部外形正常,全腹柔软,无压痛及反跳痛,腹部未触及包块,肝脏肋下未触及,脾脏肋下未触及,双肾未触及。双上肢、左下肢无畸形,感觉、活动良好。
专科情况
视:右足下垂内翻畸形,右大腿中下段、右小腿前外侧可见皮肤伤口愈合疤痕,右小腿上段内侧可见约3cm伤口,钢板部分外露,伤口周围皮肤红肿,伤口有少量渗出。
触:右小腿伤口局部触痛(+),右大腿及右小腿除伤口局部外无压痛。右膝下胫前、外侧以及足背皮肤针刺觉麻木,右大腿、右小腿后侧、右足底皮肤针刺觉正常。右足背动脉可触及。
影像学检查
右胫腓骨正侧位X线片:右胫骨上段可见内固定钢板螺钉在位,未见断裂,右胫骨近端可见三角形低密度灶,周围可见硬化,右胫骨中上段骨质密度增高,原骨折线已消失。
实验室一般检查
CRP:10.80mg/L↑(<5); 血沉:46.0mm/h↑(<21),其余未见异常。
微生物检查(4.22)
送检伤口分泌物涂片革兰染色、细菌培养结果均阴性。
初步诊断
右小腿感染慢性骨髓炎钢板外露;右腓总神经损伤(马蹄足畸形);右股骨干、右胫腓骨骨折内固定术后(骨性愈合);右踝关节僵直;右膝关节屈曲活动受限。
诊疗计划
1、向患者及家属交待病情及注意事项。
2、向上级医生汇报患者病情。
3、完善入院相关检查。
4、给予伤口换药,行伤口分泌物培养+药敏试验。
5、专业组讨论。
6、择期手术。
治疗情况
艾利克冲洗伤口,口服利福平,克林霉素1200 mg/qd常规抗感染治疗。
4.28行右小腿伤口扩创、病灶清除、内固定物取出+筋膜瓣成形术。术中对钉孔部刮除物送细菌涂片及培养,术后继续口服利福平,克林霉素1200 mg/qd抗感染、预防血栓治疗。
4.30安排出院,继续口服利福平治疗,定期门诊复查。
后续检查结果回馈(5.6)
4.28 送术中钉孔部刮除物细菌涂片及培养。细菌涂片革兰染色:极少G+球菌,少量G-杆菌;培养结果:5.6报告金黄色葡萄球菌及手工K-B法药敏结果。
4.30菌落细小、针尖样,无溶血。质谱鉴定为:金黄色葡萄球菌(2.424)。染色:G+C,因菌落不典型、针尖样大小,继续孵育。
图一
图二
图一:原始平板,CO2环境35℃孵育6天;图二:菌落革兰染色
5.1第二次质谱结果为:金黄色葡萄球菌,分值2.320,血浆凝固酶:阳性,染色:G+C,原始平板分纯;
5.4按一般阳性球菌上梅里埃VITEK2-Compact GP卡鉴定及GP67药敏卡;
5.5 无鉴定结果,药敏只有苯唑西林≦0.25,S;替加环素≦0.12,S,其他药无结果,K-B法做药敏;
5.6 第三次质谱结果仍为:金黄色葡萄球菌,质谱分值2.230,报告鉴定及药敏结果。
第三代培养24h后,出现β溶血现象,再次上机(梅里埃VITEK 2-compact GP卡及GP67药敏卡),鉴定为松鼠葡萄球菌,鉴定可信度98%。
图一:二氧化碳环境孵育24h,图二:二氧化碳环境孵育48h,
图三:二氧化碳环境孵育24h,图四:二氧化碳环境孵育48h。
图一
图二
图三
图四
质谱和鉴定仪结果不一致。送成都擎科做基因测序,结果为:金黄色葡萄球菌。
药敏结果
时间 | 5月6日(第一代) | 时间 | 5月16日第三代) | ||||
抗生素 | 实验方法 | 结果 | 耐药性 | 抗生素 | 实验方法 | 结果 | 耐药性 |
苯唑西林 | MIC | ≦0.25 | S | 苯唑西林 | MIC | ≦0.25 | S |
头孢西丁 | KB | 36 | S | 青霉素 | MIC | 0.06 | S |
左氧氟沙星 | KB | 32 | S | 左氧氟沙星 | MIC | ≦0.12 | S |
环丙沙星 | KB | 24 | S | 环丙沙星 | MIC | ≦0.5 | S |
复方新诺明 | KB | 35 | S | 庆大霉素 | MIC | ≦0.5 | S |
克林霉素 | KB | 6 | R | 克林霉素 | MIC | ≧8 | R |
利奈唑胺 | KB | 40 | S | 利奈唑胺 | MIC | ≦0.5 | S |
万古霉素 | Etest | 0.75 | S | 万古霉素 | MIC | ≦0.5 | S |
米诺环素 | KB | 38 | S | 利福平 | MIC | ≦0.5 | S |
四环素 | KB | 40 | S | 四环素 | MIC | ≦1 | S |
替加环素 | MIC | ≦0.12 | S | 替加环素 | MIC | ≦0.12 | S |
红霉素 | KB | 21 | R | 红霉素 | MIC | ≧8 | R |
SASCVs形成机制
目前研究认为,SASCVs临床分离株多数是由于呼吸作用时合成能量不足所致,主要表现为与呼吸链相关的两种特异营养缺陷类型,即电子传递链缺陷型和胸腺嘧啶脱氧核苷合成缺陷型。前者又分为甲萘醌营养缺陷型和血红素营养缺陷型,主要表现为甲萘醌或血红素缺陷。该类SASCVs的产生与氨基糖苷类抗菌药物的使用密切相关。不论体内外,在氨基糖苷类药物存在的情况下,金葡菌形成SCV的概率均显著提高。胸腺嘧啶脱氧核苷(TD)合成缺陷型SASCVs(TD-SASCVs)是金葡菌对外源胸腺嘧啶脱氧核苷吸收受阻所致,主要见于长期应用甲氧苄啶-磺胺甲唑(SXT)等磺胺类药物的病例,该类药能够阻止
四氢叶酸的合成,而后者是胸腺嘧啶核苷酸合成酶的一个辅基。此外,还存在其他类型如CO 2 营养缺陷型和营养缺陷不明的SASCVs分离株。而SASCVs临床分离株有时可表现为多种营养缺陷共存。因SASCVs与其亲本株可同时出现,而SASCVs可以快速回复成野生株表型,且这种转化在体内外均可进行,故近年来人们又提出SCVs的发生与金葡菌发生基因突变有关。目前,已经报道多种基因(ctaA、menB、menD、hemA、hemB、hemH、mutS、fusA、thyA)的突变均能导致金葡菌出现SASCV表型 。
SASCVs的致病因素
金葡菌SCVs是可引起长期持久的反复发作的感染。金葡菌SCVs是细胞内持久性存在的适应表型。生存方式的改变和细菌代谢的深刻变化,影响病原菌与宿主间的相互作用,导致以SCVs感染为特征的慢性难治性感染。胞内生存方式还可保护细菌免受抗菌药物和宿主防御系统的攻击。金葡菌SCVs感染不仅存在于人类,在畜牧兽医学和食品微生物学领域也有报道。
SASCVs相关临床感染性疾病
早期研究发现,一些非特异性吞噬细胞如内皮细胞、上皮细胞、成纤维细胞、造骨细胞、角质化细胞可有效吞噬金葡菌。被吞噬的为正常金葡菌时,内吞作用可迅速破坏裂解细菌胞体。近年研究发现,SASCVs比相应的野生株更能持续存活于细胞中,同时细胞对SCVs的内吞作用可使SCVs免受宿主防御系统和抗菌药物的攻击。而当宿主细胞形成应激的保护性环境时,SCVs就会引起隐性或复发性感染。迄今为止SASCVs对慢性感染疾病的重要意义已达成共识,临床上已报道与SASCVs有关的感染多种多样,主要见于以下几大类疾病:慢性骨感染,皮肤、粘膜和软组织感染,脓肿,髋假体关节感染,囊性纤维化呼吸道感染,心脏相关植入的感染。
培养和鉴定
仔细处理标本和选择合适的琼脂平皿进行培养是SCVs诊断的先决条件。葡萄球菌SCVs在哥伦比亚血平皿上空气和二氧化碳环境中均能生长,使用葡萄球菌选择性培养基或显色培养基反而不生长或生长不良,故首选哥伦比亚血平皿。SCVs通常在24 h以后,大约48~72 h才能在固体培养基上肉眼可见。其菌落细小,约为亲代正常菌株的1/10,多呈针尖样(TD-SCVs可表现出一种不同寻常的“荷包蛋”样菌落),无色素或色素生成明显减少,缺失或β-溶血能力下降,容易被误认为是生长缓慢的棒状杆菌或非溶血性的链球菌。此外,它们经常与亲代菌株混合生长,表型并不稳定,极易恢复正常表型。由于SCVs生长缓慢,代谢变化大,经典生化反应缺失或减少,过氧化氢酶、凝固因子、凝血酶反应或其他用于识别的反应也被延迟或缺如,因此,所有基于生化过程的鉴定方法在SCVs中都不可靠,目前主要依靠PCR和基因测序技术。已被证实为金葡菌识别的分子指标如nuc、clfA、eap、coa、sodM等也能很好地识别SASCVs。对于正常的葡萄球菌表型,16SrRNA特别是rpoB基因序列,对于最终确定种和亚种非常有用。然而,鉴定葡萄球菌SCVs,必须考虑已知公共序列数据库的局限性。
药敏试验
由于SCVs的低生长率和低代谢率,各种常规方法检测其对抗生素的敏感性存在困难或不能完成。因此,尽管传统的方法(琼脂扩散法或E 试验)可以提供SCVs对抗生素敏感与否的证据,但应保证细菌必须在琼脂平皿上生长足够的时间(3~5 d),更要谨慎地评估其MIC数据。因SCVs是在细胞内环境中被诱导和选择的,故一些体外细胞培养模型被用来进一步研究SCVs在细胞内的抗药性 。综合起来,这些模型结果显示,所有抗菌药物在细胞内对正常菌株的活性都比对SCVs菌株高,提示在宿主细胞内,SCVs对药物治疗具有更高的耐受性,临床在治疗SCVs感染时要充分考虑到这些因素。
SASCVs感染的治疗
目前对葡萄球菌SCVs感染的最佳治疗方法尚不清楚,但临床在选择治疗方案时应综合考虑以下问题:①SCVs营养缺陷的类型;②SCVs在宿主细胞内的位置;③SCVs和∕或亲代菌株药敏试验的结果。此外,还必须考虑各感染部位的药动学 /药效学(PK/PD)数据等 。而理想的抗SCVs药物,不但要具有能够穿透细胞膜进入SCVs所在宿主细胞内的能力,还能在胞内保持杀灭这种缓慢生长表型细菌的抗菌活性。利福平是能够满足这些要求的抗葡萄球菌药物,但利福平单药使用将很快出现高水平耐药,故建议联合其他一种或多种敏感的抗生素共同治疗SCVs。将达托霉素、利福平及庆大霉素三者合用或达托霉素-利福平或庆大霉素-利福平二者配伍使用对清除人单核细胞源性巨噬细胞内的SASCVs效果最为明显。慢性骨髓炎患者,金葡菌躲藏在死骨碎片里,抗菌药物或机体免疫系统很难作用到死骨碎片中的细菌,这种情况迫切需要外科手术来清除感染。
总之,SASCVs所致的慢性感染极为棘手,给微生物室和临床均带来了严峻的挑战。实验室人员要加强学习,不断提高对SCVs菌株的分离、鉴定及药敏能力;临床医师不但要对已发生的SASCVs感染采取积极的治疗(如尽快移除感染的植入装置、选择敏感抗菌药物持续治疗等),还要对潜在的感染进行有效的预防,从而减少SASCVs感染的发生。